Investigación biomédica
Genotipificación del Virus del Papiloma Humano en mujeres en edad reproductiva del estado Zulia, Venezuela
Pacientes y métodos
Investigación
descriptiva con diseño no experimental, transeccional transeccional y de campo,
en la cual se estudio una muestra intencionada y no aleatoria conformada por
236 mujeres en edad reproductiva atendidas en el Hospital Materno Infantil “Dr.
Rafael Belloso Chacín” (Grupo A), Maternidad “Dr. Armando Castillo Plaza” (Grupo
B) y Hospital “Dr. Pedro García Clara” (Grupo C). Se incluyeron mujeres sexualmente activas, con edades entre 18-45
años, reclutadas por diferentes estrategias de convocatoria (bola de nieve,
grupos comunitarios organizados y citación por el personal de salud); quienes
fueron remitidas a la consulta ginecológica para tamizaje del cáncer de cuello
uterino; excluyéndose pacientes con diagnóstico o presunción de embarazo, con
diagnóstico confirmado de cáncer cervical o con contraindicaciones para la
realización de la genotipificación viral y/o la citología cervico-vaginal, o
que no aprobasen la realización de tales procedimientos.
Las pacientes
seleccionadas fueron valoradas en la consulta ginecológica, donde con la ayuda
de una ficha de trabajo diseñada ad hoc, se asentaron datos socio-demográficos y
clínicos obtenidos por medio de la entrevista clínica, así como los resultados
de las pruebas y procedimientos realizados. Seguidamente, se realizó una
valoración por sistemas y un examen ginecológico, realizándose los siguientes
procedimientos:
- Toma
de muestra para citología cervico vaginal: con la paciente en posición de
litotomía, se procedió a visualizar los genitales externos e introducir un
especulo vaginal de Graves desechable y una vez fijado el cuello uterino, se
inspeccionó el mismo y se tomaron
muestra de endocérvix con un cepillo (citoblush) y con espátula de Ayre para
el exocérvix y fondo de saco vaginal posterior. Las muestras recolectadas se
extendieron en una lámina portaobjeto, previamente rotulada, y se fijaron con
fijador citológico en espray, a una distancia de un metro aproximadamente;
manteniéndose almacenadas a temperatura ambiente en un laminario hasta el
momento de su procesamiento. Posteriormente, fueron teñidas con la tinción de
Papanicolaou y se procesaron en los laboratorios del Departamento de Anatomía
Patológica del Hospital General del Sur, sede del postgrado en esa especialidad
de la Universidad del Zulia. Los resultados se reportaron siguiendo la
nomenclatura Bethesda y además en el informe de la citología se incluyeron los
grados de inflamación observados, la presencia de microorganismos o cambios que
sugieren la presencia del VPH (31).
- Toma de muestra para genotipificación de VPH:
Se tomó un hisopado del canal endocervical con un hisopo de dacrón esteril, el
cual se insertó de 1 a 1,5 cms del orificio cervical externo del cuello uterino
(zona de transición escamo-columnar de la región endocervical) y fue rotado 3
veces, retirado del canal e introducido en un tubo que contiene 1 ml de
buffer de preservación-lisis estéril
como medio de transporte, previamente identificado y rotulado. Las muestras se
trasladaron al laboratorio Diagnóstico Molecular (DIAGMOLCA), empresa privada
con reconocida trayectoria en la realización de pruebas de biología molecular,
mantenidas a 4º C y procesadas dentro de los primeros 3 días de su recepción.
En primer lugar, se realizó la
extracción del ADN de las muestras endocervicales. Para ello, se transfirió 500 µl del buffer de lisis, contentivo del hisopo a un
tubo de 1,5 ml, se centrifugó a 12.000
rpm por 10 minutos y el sedimento se resuspende en 500 µl de buffer de lisis
(50 mM Tris-Hcl pH 7,5, 1% Triton X-100, 1 mM EDTA, 150 µg/ml de proteinasa K).
La muestra es incubada a 56ºC por 2 horas, los lisados se centrifugan a 14.000
rpm y el sedimento se resuspende en 30 µl de buffer TE; se utiliza 10 µl de la
muestra para ensayos de amplificación.
Para la detección y genotipificación
viral se llevaron a cabo reacciones de amplificación por PCR utilizando un
formato de PCR múltiple que incluyó oligonucleótidos iniciadores dirigidos a
secuencias específicas del genoma viral
de genotipos de bajo riesgo oncogénico VPH 6/11
(Oligonucleótidos VPH6/!F y VPH 6/11: R GenBank: KC300186.1) y cinco genotipos de alto riesgo oncogénico: VPH
16 (Oligonucleótidos VPH16F y VPH16R: GenBank: KF181718.1); VPH 18
(Oligonucleótidos VPH18!F y VPH18R, GenBank: KC470230.1); VPH 31
(Oligonucleótidos VPH31!F y VPH31R, GenBank: KC662562.1); VPH 33 (Oligonucleótidos VPH33F y VPH 33R,
GenBank: JQ976784.1); y VPH 35 (Oligonucleótidos VPH35F y VPH 35R, GenBank: JX129488.1). La identidad y
especificidad de los oligonucleótidos se verificó en las bases de datos
genómicos del Centro Nacional de Información Biotecnológica (NCBI: National
Center for Biotechnology Information) de Estados Unidos. Se incluyeron como
control positivo ADN aislado de muestras
caracterizadas con el kit Seeplex de Digene, USA y como control negativo
se utilizará ADN genómico humano (PROMEGA); dichas reacciones se llevarán a cabo en un
termociclador MJ Research PTC-100™.
Los productos obtenidos se analizaron
en geles de agarosa al 2 %, los cuales fueron teñidos con bromuro de etidio,
visualizados en transiluminador ultravioleta y fotografiados con sistema de
fotodocumentación DigiDoc, UVP; una muestra se consideró positiva para uno o
más genotipos determinados, cuando el patrón de migración de los productos de
PCR amplificados a partir de la muestra, coincida con el patrón de migración
(peso molecular) de los productos de PCR específicos de los genomas virales
presentes en el control positivo. Los resultados positivos se calificaron según
el riesgo oncogénico de los genotipos detectados y en caso de existir
co-infección entre genotipos de alto y bajo riesgo se consideró como de alto
riesgo.
Todas las pacientes participaron de manera voluntaria, suministrando su consentimiento
informado para su inclusión en la investigación y no se encontraron expuestas a
riesgos físicos o psicológicos, ni se vulneraban los principios de la
Declaración de Helsinki para estudio en humanos; asimismo, el protocolo de
estudio fue previamente revisado y aprobado por los comité de bioética de cada
uno de los centros de salud donde se ejecutó la investigación. Posteriormente,
fueron citadas para la entrega de resultados y los casos donde se detectó el
virus o que presentaron alteraciones citológicas se derivaron a la consulta ginecológica
para realización de colposcopia, toma de biopsias y recibir el manejo o
tratamiento específico.
Para el procesamiento de los datos obtenidos se utilizó el Paquete Estadístico para Ciencias
Sociales (SPSS), versión 21. Se ejecutó un análisis de tipo descriptivo, donde los
mismos fueron expresados en frecuencias absolutas, frecuencias relativas
(porcentajes), medidas de tendencia central (medias) o medidas de dispersión (desviación
estándar) y se presentaron en tablas de distribución de frecuencias.
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